Practicas del laboratorio de parasitología

Practicas del laboratorio de parasitología

Este blog fue elaborado por el equipo 2 del Centro de Bachillerato Tecnológico industrial y de servicios No.26 de San Felipe del Agua Oaxaca, de la especialidad de laboratorio clínico en Unidad 3 Módulo II: Identifica microorganismos con base en técnicas microbiológicas para diagnóstico clínico.Submódulo 2 – “Identifica microorganismos con base en técnicas parasitológicas” con el fin de cumplir con la Competencia Genérica: SE EXPRESA Y COMUNICA.  4. Escucha, interpreta y emite mensajes pertinentes en distintos contextos mediante la utilización de medios, códigos y herramientas apropiados.

Atributos: Maneja las tecnologías de la información y la comunicación para obtener información y expresar ideas.

Este blog incluye el siguiente contenido:

›  Método directo

›  Método de flotación por sulfato de zinc

›  Método de Kato (variación Katz)

›  Flotación por Sheather (SOLUCIÓN DE SACAROSA)

›  Técnica de Willis

›  Método de Baermann

›  Tinción de Giemsa

›  Tinción de Wright

›  Hematocrito

›  Exudado vaginal

›  Experiencia del viaje

›  Experiencia de trabajo en equipo

›  Experiencia del teatro negro

Esperemos que sea de su agrado y utilidad.

 (Equipo 2, 2014)

  

Técnica directa

¿Qué aprendí?

Gracias a esta práctica aprendí a realizar el examen coproparasitoscopico directo, es muy simple, necesitamos para ello una gota de lugol y otra de solución salina, posteriormente le agregamos una muestra pequeña de copro y lo observamos al microscopio.

Además de ser muy fácil es de bajo costo y la utilizamos para ir a una práctica de campo en Ixtlán de Juárez, tal vez no obtuvimos los resultados que deseábamos pero adquirimos una nueva experiencia, que nos ayudara en nuestro capo laboral.

¿Cómo lo hice?

Materiales:

• Aplicador de madera
• Microscopio
• Porta objetos y cubre objetos

Sustancias:

• Solución lugol
• Solución fisiológica 

Procedimiento:

1.    Rotulamos el porta-objetos con el número de bitácora  y la fecha.

2.   Dibujamos dos círculos que nos servirán de guía y trabajamos del lado contrario donde hicimos esto.

3.   En cada extremo (donde están los círculos) agregamos en uno solución salina y en el otro lugol

4.   Con un aplicador de madera tomamos una porción de heces y hacemos una suspensión, primero en la solución salina y después con lugol.

5.   Finalmente colocamos un cubre-objetos en cada uno de los extremos.

6.   Observamos al microscopio

(Kaminsky, 2003)

Técnica de Kato-katz y de concentración por sulfato de zinc

¿Qué aprendí?

Con esta práctica logre alcanzar las siguientes competencias:

•  Utilizar de forma correcta el hidrómetro, después de cuatro veces de haberlo empleado considero que soy más rápida para medir la densidad, cuando necesitas que la densidad sea mayor le agregas más agua y cuando necesitas que baje le agregamos más reactivo. 
• Conocer una nueva técnica, la de Kato Katz, la cual nos ayuda a observar huevos de Taenia sp o de Hymenolepsis nana, que son nematodos trasmitidos por el suelo y schistomiasis. También poderla realizar de manera exitosa y quedándome con este conocimiento, ya que se realiza de forma muy fácil. 
•  Practicar más la técnica de flotación con sulfato de zinc y poderla realizar de forma más rápida y eficaz, es importante saber utilizar esta técnica para concentrar huevos de ciertos helmintos y quistes de protozoos.
• Lograr trabajar en equipo, rotándonos para realizar diversas actividades y ayudar a compañeros que no entendían alguna de las técnicas al realizar.
•  Solucionar problemas ante situaciones compicadas en el momento que tuvimos que improvisar con los materiales con los que contábamos y hacer un templete y también buscar los materiales que se necesitaban en otro laboratorio (microscopio) para no perder el dia de practica
• Manejar bien la centrifuga, ya que si  no equilibramos bien los tubos de ensayo estos pueden romperse y ocasionar perdida de material, dañar el equipo y tener que limpiar.
•  Conocer la importancia de las medidas de RPBI, desechando las muestras en el inodoro y en los frascos hacer una solución de cloro, para evitar cualquier tipo de accidentes.  

¿Cómo lo hice?

TECNICA DE KATO (VARIACION KATZ)

Materiales:

•  Espátula plástica de madera
•   Templete de plástico (Problema 1)
• Cuadros de 4 cm X lado de tela metálica
• Papel periódico
•   Pinzas de mosquito
• Baja lenguas
• Microscopio  (Problema 2)
• Porta-objetos
• Cubre-objetos

Sustancias:

•  Glicerina pura                                100 mL
•  Agua destilada                               100 mL
• Verde malaquita al 3%                 1 mL
• Muestra de heces

*Se mezcla bien estos reactivos en un frasco de boca ancha con tapadera e introducir los cuadros de celofán para sumergir en la solución. Estos cuadros ya estaban preparados en el laboratorio, por exceso de este material no los preparamos

Procedimiento:

1.   Colocamos el papel periódico en nuestro espacio de tarja

2.   Con una baja lenguas tomamos una cantidad de heces y la colocamos en el papel de estraza. 

3.   Después colocamos el cuadro de tela metálica arriba de la muestra, rapamos con el baja lenguas (hace las veces de un colador) para que no quede exceso de fibras.                                            (Gállego Berenguer, 2007)

4.   Posteriormente arriba  nuestro porta-objetos (rotulado) colocamos el templete, y con las heces previamente coladas colocamos en el orificio del templete hasta llenarlo.

5.   Quitamos el templete con cuidado para conservar la forma de bolita.

6.   A continuación con las pinzas de mosquito colocamos un cuadro de celofán en la muestra.

7.   Con el dedo pulgar presionamos en papel celofán para extender las heces por todo el cuadro.

8.   Colocamos el porta objetos del lado contrario de la preparación para mantener libre de factores de contaminación.

9.   Esperamos de 30-45 min. Tiempo en el cual se aclaró. Lo pudimos comprobar porque se podía visualizar las letras del periódico en el preparado.

10.       Observamos al microscopio con las siguientes características:

                                                                                                                 (Kaminsky, 2003)

(Barros, 2014)

MÉTODO DE FLOTACIÓN POR SULFATO DE ZINC

Materiales:

• Hidrómetro
• Gasas
• Embudo
• Aplicadores de madera
• Tubos de ensayo (según la centrifuga)
• Vaso de precipitado de 5 ml
• Asa bacteriológica
• Gradilla
• Centrifuga
• Mechero de alcohol
• Centrifuga (Problema 4)
• Microscopio
• Porta-objetos
• Cubre-objetos
• Probeta

Reactivos:

•  Sulfato de zinc 
• Solución salina fisiológica
• Solución lugol (Problema 3)
•  Agua destilada

*Para preparar la solución de sulfato de zinc con una densidad de 1.18, nos ayudamos del hidrómetro y en una probeta agregamos 1 ml de sulfato de zinc (liquido) agregamos agua hasta lograr la densidad deseada y por ultimo agregamos más sulfato de zinc para que flote el densímetro y si es necesario agregamos más agua destilada para lograr la densidad.

(Lawrence Ash, 2010)

Procedimiento:

1.   En un vaso de precipitado colocamos una cantidad de heces e hicimos una suspensión.

2.   Después filtramos, mediante una gasa con dos dobleces en un embudo, colocando el líquido resultante en un tubo de ensayo.

3.   Llevamos a la centrifuga durante 2 minutos.

4.   Tiramos el líquido sobrenadante y sustituimos con sulfato de zinc, y agitamos el sedimento para homogenizar.  
                                                                                                                 (Jorge Tay, 2002)

5.   Colocamos en la centrifuga por 2 minutos mas

6.   Sin sacar los tubos de ensayo de la centrifuga, esterilizamos el asa bacteriológica con el mechero y dejamos enfriar. Tomamos varias asadas de la película superficial del tubo de ensayo y las colocamos en un porta-objetos.

7.   Cubrimos con un cubre-objetos y observamos al microscopio, con las siguientes características.

Observaciones:

(Kaminsky, 2003)

¿QUE PROBLEMAS ENFRENTE Y COMO LOS RESOLVÍ?

*Materiales

(Problema 1) El laboratorio no contaba con templete de plástico, así que tuvimos que improvisar uno con papel cascaron.

(Problema 2) El laboratorio no tenía microscopios ya que estaba programada la salida de campo de nuestros compañeros de otro grupo, así que en compañía del profesor fuimos a solicitar microscopios al laboratorio de biología.

(Problema 3) El laboratorio no contaba con lugol por la misma razón del problema 2 descrito anteriormente.

(Problema 4) La centrifuga no tomaba correctamente el tiempo y no se detenía en el momento que debía detenerse y no podíamos usar otra centrifuga porque no nos querían cambiar los tubos de ensayo y fue ocasionado por la misma razón del (problema 2), lo solucionamos tomando el tiempo con el cronometro y deteniéndola manualmente (con los botones de control).

*Técnica

Olvidamos mezclar una de las muestras al momento de agregar el sulfato de zinc. 

¿Qué aprendí?

Con estas prácticas logramos tener las siguientes competencias:

• Tener dos nuevas técnicas para prácticas de campo, que nos podrán ser de mucha utilidad en situaciones donde no tengamos los reactivos necesarios y con el azúcar y la sal podríamos sustituirlos, siendo más económicos y además, requieren poco tiempo y es fácil de realizar. Además con esta podemos identificar ooquistes de Isospora belli, Cryptosporidium spp. Y Cyclospora cayetanesis
• Pudimos identificar huevos de Giardia lambia en nuestro estudio, con la técnica de flotación por Sheather.
• Todos los integrantes del equipo realizaron al menos una de las técnicas, con lo que trabajamos como equipo para realizar de manera efectiva la práctica
• Apoyamos a los integrantes que no tenían conocimiento de la práctica y en base a videos y el libro (Cabello, 2011) realizamos la practica con fuentes confiables.
• Resolvimos problemas ante situaciones difíciles, consiguiendo el material necesario en otro laboratorio e improvisando los materiales que no teníamos.
• Además del método de Baermann, que es muy útil para detectar Strongyloides y  Angiostrongylus.
• Nos rotamos para realizar distintas actividades
•  Aprendimos a realizar estas técnicas de manera eficiente

¿Cómo lo hice?

TÉCNICA DE FLOTACIÓN POR SHEATHER (SOLUCIÓN DE SACAROSA)

(N.D., 2014)

Materiales:

• Tubos de ensayo
•  Aplicadores de madera
•  Vaso de precipitado
•  Porta objetos
•  Cubre objetos
•   Microscopio

Reactivos: 

• Sacarosa
• Agua destilada

Para realizar la solución de sacarosa, tomamos 40 ml de agua destilada y agregamos azúcar, hasta que no pudo disolverse más y algunos cristales quedaban sedimentados, entonces sabemos que esta lista para ser utilizada.

Procedimiento:

1. Identificar la muestra a trabajar.
   
   
2. En un tubo de ensayo colocamos a un tercio de su capacidad, la solución de azúcar realizada previamente.
3. Con un aplicador de madera tomamos 1 gr de materia fecal (aproximadamente) agitamos vigorosamente.
   
4. Llenamos el tubo de ensayo hasta 3 cm antes del borde y volvemos a agitar
   
5. Posteriormente llenamos totalmente el tubo de ensayo, de tal forma que en la boca del tubo quede un menisco.
   
6. Colocamos un porta objetos y dejamos reposar durante 15 minutos, para que los huevos floten a la superficie.
   
7. Trascurridos los 15 minutos quitamos el porta objetos y colocamos el cubre objetos.
8. Procedemos a observar al microscopio, con los siguientes resultados.

Nota: realizar dos tubos por cada muestra, para que a uno se le agregue lugol y al otro no le agregamos nada.

TÉCNICA DE WILLIS

(Lawrence Ash, 2010)

Materiales:

• Tubos de ensayo
• Aplicadores de madera
•   Vaso de precipitado
•  Porta objetos
• Cubre objetos
•  Microscopio

Reactivos:

• Agua destilada
• Cloruro de sodio (NaCl)

Para realizar la solución de cloruro de sodio, tomamos 40 ml de agua destilada y agregamos cloruro de sodio, hasta que no pudo disolverse más y algunos cristales quedaban sedimentados, entonces sabemos que esta lista para ser utilizada.

Procedimiento:

1. Identificar la muestra a trabajar.
2.  En un tubo de ensayo colocamos a un tercio de su capacidad, la solución de cloruro de sodio realizada previamente.
3. Con un aplicador de madera tomamos 1 gr de materia fecal (aproximadamente) agitamos vigorosamente.
   
4.  Llenamos el tubo de ensayo hasta 3 cm antes del borde y volvemos a agita
5.  Posteriormente llenamos totalmente el tubo de ensayo, de tal forma que en la boca del tubo quede un menisco.
   
6. Colocamos un porta objetos y dejamos reposar durante 15 minutos, para que los huevos floten a la superficie.
   
7. Trascurridos los 15 minutos quitamos el porta objetos y colocamos el cubre objetos.
8.  Procedemos a observar al microscopio, con los siguientes resultados.

Nota: realizar dos tubos por cada muestra, para que a uno se le agregue lugol y al otro no le agregamos nada.

(Kaminsky, 2003)

 (Carvajal, 2014)

MÉTODO DE BAERMANN

(Santana, 2014)

 

Materiales:

·         Soporte universal

·         Embudo de plástico

·         Anillo

·         Centrifuga

·         Tubo de ensayo

·         Pinza

·         Gasas

·         Manguera de hule

·         Vaso de precipitado

·         Mechero de bunsen

·         Tripee

·         Tela de alambre con centro de asbesto

·         Termómetro

Sustancias:

·         Agua de llave a 37°

Procedimiento:

1. En un vaso de precipitados de 50 ml, calentar agua de la llave a 37° C, con la ayuda del mechero de bunsen, hasta llegar a la temperatura requerida, que será marcada por el termómetro.
   
2. Colocamos el soporte universal con el anillo y el embudo de platico, este llevara la manguera de hule, y al final de la manguera se colocaran unas pinzas.
   
3. Sobre papel de estraza, colocamos una gasa con dos dobleces y encima ponemos de 3-4 gr de heces fecales. Tomamos los cuatro extremos de la gasa y lo amarramos con un hilo, de tal modo que quede como un costalito.
4. Con un aplicador de madera tomamos esta costalito y lo colocamos en la boca del embudo de plástico.
5. Llenamos con agua destilada, de tal manera que queden sumergidas las heces
   
6. Esperamos 30 y por acción de decantación las larvas migraran a la parte de debajo de la manguera
7. Trascurrido este tiempo, quitamos la pinza del final de la manguera y en un vaso de precipitado, colocamos  el líquido.
8. Vaciamos este en un tubo de ensayo y centrifugamos durante 10 minutos, cuidando que queden balanceados en la centrifuga
   
9. Con una pipeta Pasteur tomamos una parte del sedimento.
10.  En un porta objetos colocamos dos gotas de este sedimento y a una le agregamos lugol.
11. Colocamos el cubre objetos a cada gota y procedemos a observar al microscopio

¿Qué aprendí?

En esta práctica pude realizar dos tipos de muestra (frotis) de sangre para el diagnóstico de la malaria. Además de los siguientes aspectos:

ü  Realice dos tipos de preparaciones que me permite identificar: en el extendido fino que consiste en una sola capa de células y hay que tener especial cuidado para que se realice de manera óptima, y con la coloración de Giemsa, ya que no es posible realizar una coloración de Wright con gota gruesa. Analice los siguientes aspectos:

·         Grosor: una sola capa de células

·         Eritrocitos: azul a rosado

·         Plaquetas: Rosado intenso a morado

·         Núcleo de leucocitos: azul intenso a morado

·         Gránulos de leucocitos: rosado, azul y morado en una misma célula (neutrófilos) y rojos (eosinófilos)

·         Citoplasma de leucocitos: azul pálido a azul                       (Kaminsky, 2003)

ü  Con la tinción de Wright pude analizar estos aspectos:

·         Grosor: de 10  a 20 leucocitos por campo de inmersión.

·         Coloración

·         Fondo de la muestra claro

·         Restos de eritrocitos: azul 

·         Plaquetas y leucocitos con las mismas características que el anterior.  (Kaminsky, 2003)

ü  Estas tinciones son importantes que las realice de manera adecuada ya que el estado de Oaxaca tiene brigadas contra el paludismo e invierte en ellas para la erradicación de esta enfermedad.

ü  Cuando se tiene una muestra positiva se deben observar tres componentes en todos los estadios, excepto en los anillos los cuales no contienen pigmento:

Ÿ  Citoplasma azul

Ÿ  Cromatina rojo/morado

Ÿ  Gránulos amarillo-café del pigmento malárico

ü  Además pude practicar estas tinciones y métodos para la muestra sanguínea dando un adelanto a la materia de hematología y adquiriendo conocimientos previos, y se realizó porque estas pruebas se realizan para detectar el parasito de malaria.

¿Cómo lo hice?

                                                     COLORACIÓN DE GIEMSA

Materiales:

      Porta objetos

      Cubre objetos

      Puentes

      Microscopio

      Lancetas

      Torundas con alcohol

Reactivos:

     Alcohol metílico puro

     Agua destilada

     Solución amortiguadora

     Solución de Giemsa

Procedimiento:

Preparación de la gota gruesa

http://es.scribd.com/doc/58975875/Tecnica-de-Gota-Gruesa-y-Protis-Para-Identificar

1)    Limpiamos la yema del dedo con una torunda con alcohol y secamos con otra torunda (seca)

2)    Con una lanceta pinchamos en el tercer dedo de la mano no dominante
3)    Desechamos la primera gota de sangre

4)    En el centro del porta objetos colocamos la segunda gota de sangre

5)    Usamos la esquina del segundo porta objetos y extendimos la sangre, de tal manera que formo un rectángulo con un grosor uniforme.

6)    Secamos con calor

7)    Colocamos el colorante de Giemsa, una gota por cada mililitro de solución amortiguadora por toda la preparación en el porta objetos ayudándonos con un gotero

8)    Dejamos colorear durante 8 minutos

9)    Transcurrido este tiempo se lava el exceso con agua destilada para obtener una buena calidad.

10) La muestra la secamos al aire

11)Observamos con el objetivo de inmersión

 Eritrocitos amorfos

(Kaminsky, 2003)

COLORACIÓN DE WRIGHT

Materiales:

      Porta objetos

      Cubre objetos

      Puentes

      Microscopio

      Lancetas

      Torundas con alcohol

Reactivos:

     Agua destilada

     Solución amortiguadora

     Solución de Wright

Procedimiento:

1)    Limpiamos la yema del dedo con una torunda con alcohol y secamos con otra torunda (seca)

2)    Con una lanceta pinchamos en el tercer dedo de la mano no dominante

3)    Desechamos la primera gota de sangre

4)    En un extremo de la porta objetos colocamos la segunda gota de sangre y colocamos el segundo porta objetos sobre esta, haciendo un ángulo de 30°.

5)    Deslizamos hacia adelante para que la sangre se extienda, la gota de sangre debe ser pequeña para que sea totalmente extendida antes de llegar al final del porta-objetos. Debe tener un grosor de una sola capa de eritrocitos.

6)    Colocamos el colorante de Wright, una gota por cada mililitro de solución amortiguadora por toda la preparación en el porta objetos ayudándonos con un gotero, durante 8 minutos

7)    Transcurrido este tiempo se lava el exceso con agua destilada para obtener una buena calidad. Dejamos secar

8)    Observamos con aceite de inmersión

Eritrocitos

¿Qué problemas tuve y como lo resolví?

a)    Nos costó trabajo obtener la muestra con la lanceta, así que tomamos una muestra venosa para realizar las tinciones.

b)    Se tardaba algo de tiempo en secar las muestras, para poder observarlas.

¿Qué aprendí?

Hematocrito 

Gracias a esta práctica pude realizar un estudio que lo aprenderé de manera más exhaustiva en el próximo semestre pero que estoy adelantando y obteniendo conocimientos previos como fueron los siguientes:

ü  El hematocrito es el porcentaje del volumen total de la sangre compuesta por glóbulos rojos.

ü  Nos ayuda a determinar si el paciente padece alguna anormalidad ya que si los valores son bajos puede ser causado por:

•  Anemia
• Fallos en la médula ósea (Radiaciones, toxinas, fibrosis, tumores, etc.)
• Embarazo
• Hemorragias
• Hipertirodismo
• Hemolisis (destrucción de glóbulos rojos) por una transfusión
• Leucemia
• Problemas de alimentación
• Artritis reumatoide

ü  Pero si los valores son muy altos puede deberse a:

• Cardiopatías
• Deshidratación
• Eclampsia (en el embarazo)
• Enfermedades pulmonares crónicas
• Exceso de formación de hematíes (eritrocitosis)
• Policitemia vera
• Choque (shock).
•  (N.D., 2014)

ü  Este es un examen sencillo ya que lo único que debes realizar es tomar una porción de sangre en un tubo capilar y centrifugarlo por 5 minutos, posteriormente realizas los cálculos necesarios para determinar si los valores son normales.

ü  Al centrifugar podemos apreciar dos partes una que se sedimenta y queda de color rojo, es el paquete celular y la parte liquida que es de color amarillo y es el plasma, necesitamos medir estos para obtener el resultado del hematocrito.

¿Cómo lo hice?

Materiales:

      Lanceta

      Torundas

      Tubos capilares

      Plastilina

      Mechero

      Micro centrifuga

      Tubo vacutainer

      Aguja

      Ligadura

Procedimiento:

1.    Tomamos el dedo anular de la compañera y limpiamos con una torunda con alcohol en el área a puncionar, dejamos secar.

2.    En la parte de los extremos del dedo con una lanceta realizamos la punción.

3.    Con un tubo capilar tomamos la gota de sangre que salió y dimos un masaje para que saliera la sangre suficiente, para llenarlo a ¾ de su capacidad

4.    Con plastilina tapamos un extremo del tubo capilar

5.    Realizamos la punción venosa

6.    Tomamos la sangre del tubo vacutainer y llenamos el tubo capilar

7.    Con el mechero sellamos uno de los extremos

8.    Metimos a la centrifuga durante 5 minutos, tiempo en el cual se debe sedimentar el paquete celular y el plasma debe quedar de color amarillo, siendo este de mayor proporción que el paquete celular

9.    Realizamos los siguientes cálculos

7.3 cm – 100

2 cm – x

7.3X= 100 (2)

X= 200/ 7.3

X= 27. 39%

Los valores respecto a nuestra tabla y considerando que el rango de edad en la que está el compañero es entre  5- 15 años su nivel de hematocrito es bajo y debe acudir al médico para que diagnostique que problema puede tener.

Valores normales del hematocrito:

Recién nacido	44 a 56 %
A los 3 meses	32 a 44 %
Al año de edad	36 a 41 %
Entre los 3 y 5 años	36 a 43 %
De los 5 a los 15 años	37 a 45 %
Hombre adulto	40 a 54 %
Mujer adulta	37 a 47 %

  (N.D., 2014)

Según el disco de medición los el porcentaje que presentaba era de 59% en este caso elevado, entonces si debe acudir a una revisión porque en ninguno fue normal

¿Qué problemas tuve y como los resolví?

El primer problema que enfrentamos fue al momento de realizar la punción, porque no obteníamos la cantidad suficiente de sangre para llenar el tubo capilar, y además al momento de colocar en tubo capilar este también se llenaba con aire, entonces decidimos hacer una punción venosa con la cual pudimos tomar la sangre del tubo vacutainer y fue más fácil.

Otra dificultad que enfrentamos fue que desconocíamos cual era el mejor material para sellar el tubo capilar, utilizamos plastilina y con el mechero y nos resultó mejor con plastilina.

Algo muy importante que nos ocurrió fue que al momento de usar la micro centrifuga, no la tapamos bien y esto provocó que se salieran los tubos capilares y se rompieron todos, lo que hicimos fue limpiarla y volver a realizar el procedimiento para obtener nuestros tubos capilares, esta vez no se nos olvidó tapar bien la micro centrifuga.

Práctica 6

-Método de concentración  por flotación de Faust.

1.- ¿Qué aprendí?

En esta técnica diría que no aprendí mucho, si no que reforcé a gran escala mi conocimiento sobre la técnica de concentración, los tiempos en la centrífuga y la forma en la que se recoge el sedimento.

El clima de trabajo estuvo un poco melancólico, porque se trataba de la última práctica que hacíamos como equipo, y todos nos hemos acostumbrado a trabajar, organizarnos, divertirnos juntos. Este es un equipo al que apreció mucho y me gustaría volver a trabajar con ellos.

Esta técnica fue sencilla para todos, pues la venimos trabajando desde segundo semestre, y en teoría ya la conocemos por eso nuestro margen de error es mucho menor.

Aprendimos también que algunas heces tardan más en disolverse que otras y que pueden traer más problemas a la hora de colarlas por la gasa, y que son sólo 10ml de agua destiladas los que se le ponen.

 2.- ¿Cómo lo hice?

1) Mezclar bien una porción de materia fecal para preparar una superficie en 10 ml de agua destilada.

2) Filtrar la suspensión a través de una gasa doblada en cuatro, sobre un tubo de centrifuga, ayudándose con un embudo de vidrio.

3) Centrifugar el filtrado a 2500 rpm por 5 min.

4) Decantar el líquido sobrenadante y completar con agua hasta igualar la medida anterior, centrifugar nuevamente. Agitar el sedimento,

5) Repetir el procedimiento hasta las veces que sean necesarias hasta que el líquido sobrenadante se torne transparente.

6) Decantar nuevamente el líquido sobrenadante remplazándolo por igual cantidad de solución de sulfato de Zn al 33%. Mezclar bien la solución bien la solución con el sedimento. Centrifugar durante  5 min a 2,500 rpm.

7) Tomar de 3-4 gotas de las partículas de sedimento. Colocarlos en un porta-objeto   de ambos lados, una gota para observar de manera directa y otra con una gota de lugol-

8) Examinar al microscopio.

3.- ¿Qué problemas tuve?

En la técnica…

En la técnica se experimentaron algunos problemas en los tiempos para colocar ambos tubos de la centrífuga, pues no recordábamos bien a qué tiempo se colocaban. También si en esta técnica de recogía el sedimento o el líquido sobrenadante, fueron esas dudas las que turbaron nuestra organización de trabajo.

En el equipo…

En el equipo por primera vez se puede decir que no se tuvo ningún problema, porque todos estábamos bien organizados. El único problema que se tuvo fue que muchos no sabían que hacer porque el trabajo se terminó rápido.

4.- ¿Cómo los resolví?

En la técnica…

Se discutió el método con otros equipos que también tenían esas dudas y se llegó a la conclusión de que eran 5 min en la centrifuga y que se recogía el líquido del sedimento porque así lo habíamos hecho el semestre anterior.

En el equipo…

Al no tener problemas con los miembros del equipo, la única solución fue que todos intentaran ayudar en lo poco que se podía hacer. 

-Análisis directo de exudado vaginal.

1.- ¿Qué aprendí?

Fue también la primera vez que realizamos un análisis de una muestra de exudado vaginal, así que no sabíamos nada de la teoría más que la explicación que nos proporcionó el profesor al inicio de la clase.

Era relativamente sencilla, pues ya unos compañeros habían conseguido la muestra y nos iban a compartir un poco.

2.- ¿Cómo lo hice?

1.- Una vez obtenida la muestra por otros compañeros de equipo, se puso en fenol para conservarla.

2.- Con un hisopo se tomó un poco del líquido y se puso en ambos extremos del portaobjetos.

3.- En un extremo se colocó el cubreobjetos directamente y en otro una gota de lugol.

4.- Se observó al microscopio al 10x y 40x.

3.- ¿Qué problemas tuve?

En la técnica…

Era la primera vez que realizábamos esta práctica y sin embargo no se tuvo ningún problema de relevancia.

En el equipo…

Se tuvieron algunas complicaciones con el tiempo, pues se nos venía encima.

 4.- ¿Cómo los resolví?

En la técnica…

Se realizó la práctica de forma correcta y sin complicaciones.

En el equipo…

Nos organizamos bien y se tuvo el tiempo necesario para realizar la práctica.

Experiencia del viaje                                                                                

EL grupo de laboratorio clínico del 3 Q en coordinación con el catedrático Fausto Guzmán Ortiz, realizamos un viaje al poblado de Ixtlán de Juárez, lo cual fue una experiencia que nos hizo realizar diversos trámites, no fue sencillo pero logramos ir.
primero se tuvo que realizar un oficio, en el cual se daban los detalles de dicho viaje, además de los materiales que necesitaríamos para llevarlo a cabo, que elaboro el catedrático y lo presento a la academia para su aprobación. Posteriormente se realizó una reunión con los padres de familia para darles a conocer los pormenores del viaje.

Además se mandaron los citatorios en tiempo y forma a los padres de familia para su autorización.

1. En el punto del oficio a la escuela tuvo muchos puntos a tratar, en lo que destacaba la población, la fecha y la hora, el trasporte que utilizaríamos, el fundamento de nuestro viaje, se anexaron las listas de los alumnos que irían a dicho viaje y además los padres que acompañarían. Esto se entregó a la dirección y fue autorizada, un problema que tuvimos fue que a pesar de que se entregó de manera anticipada dicho oficio, los encargados de elaborar los permisos para la comunidad no fueron enviados a tiempo, lo cual nos causó muchos problemas, ya que la directora del prescolar a donde fuimos hacer nuestras prácticas recibió retrasadamente la información.
   Teníamos planeado realizar la actividad con los niños del jardín de niños “Margarita Maza de Juárez” y para que los padres de familia de estos niños conocieran la importancia de lo que haríamos, decidimos hacer una avanzada en la cual fueron 8 alumnos del grupo Q y R, (cada grupo haría su práctica en distintas instituciones educativas). Esta se realizó un fin de semana antes de que fuese todo el grupo ha realizar la práctica. Nos acompañaron dos madres de familia.
   
   
   El día del viaje partimos de la escuela a las 5 am, dirigiéndonos a la población. Llegamos dos horas después y comenzamos a acomodar nuestro equipo de trabajo en el lugar que nos asignó que fue la sala de juntas de la biblioteca municipal. Estuvimos esperando 7 horas pero solo se presentó una persona con su muestra, a pesar de que estuvimos anunciando ese mismo día para que las personas acudieran.  
   Como el grupo R aun iría a la siguiente semana, decidimos ir a dar otra platica a la primaria donde ellos presentarían sus servicios, esta se la impartimos a los profesores de dicha institución los que presentaron mucha atención a nuestra platica.
   
   
   
   Después de esperar el tiempo suficiente decidimos reunirnos en grupo y ponernos de acuerdo a donde iríamos, estaba planeada una caminata al cerro pero estaba lloviendo y nos tardaríamos mucho tiempo en subir. Entonces optamos por ir al parque ecoturístico, y para ello el catedrático hablo con el presidente para que nos redujera el costo de la entrada y la tirolesa.
   
   Además que tuvimos que hablar con el autobús que nos llevó, porque estaba un contrato, pero al final accedieron a llevarnos.
   
   Llegamos y fuimos a dar una caminata para ir a las grutas, el camino estaba un poco feo ya que por las condiciones climáticas se formó lodo y por esta razón me resbale
   
   en una parte del parque. Pero esto no me limito a subirme a la tirolesa y disfrutar de esta experiencia.
   
   
   Aunque no pudimos realizar las practicas que tuvimos planeado hacer, este viaje nos sirvió para saber cuál es la actitud de las personas en el sentido de prevención porque como no presentaban malestar, pues no se hicieron el examen, y con lo que me quedo de la experiencia es que hicimos todo lo que estuvo a nuestro alcance hacer y dimos lo mejor de nosotros, así que para mí lo hicimos muy bien, porque supimos organizarnos, reunir el dinero y convencer a nuestros padres. 

Experiencia de trabajar como equipo 2

En el submódulo de Identifica Microorganismos con Base en Técnicas Parasitológicas (IMBTP), a lo largo del semestre, en cuanto a trabajo práctico y también en algunas actividades de marco teórico, estuvimos colaborando conjuntamente en equipos, conformados por el catedrático a cargo. Específicamente, este texto es dedicado al trabajo que ha realizado el equipo 2, conformado por 8 compañeros y compañeras del grupo “Q” de la especialidad de Laboratorio Clínico.

Tuvimos en un principio dificultades que podían llegar a crear un ambiente hostil entre los compañeros, ya que habían diferencias que afortunadamente pronto fueron dejadas de lado para responsabilizarnos por lo que realmente era importante: el trabajo en el ámbito estudiantil. Esto fue parte de nuestra adaptación como equipo, que cabe mencionar porque la experiencia se basa en dificultades y triunfos, no sólo en el lado transparente o en lo problemático.

A partir de este momento, en adelante no hubo percances que pusieran en riesgo la armonía del equipo.

En el área de laboratorio fue muy agradable el conjunto que hicimos, ya que sin necesidad de obligar a nadie a responsabilizarse por una u otra actividad, todos tomamos parte en las decisiones y el trabajo a realizar. Tuvimos una organización bien planteada que contribuyó a la eficiencia en las prácticas, en la mayoría de las cuales tuvimos resultados satisfactorios. Además del sano sentido de competitividad que surgió en todos los integrantes.

Hacia la tercera unidad, nos habíamos conjuntado tan bien que no había necesidad de asignaciones o coordinadores; cada integrante desempeñaba una actividad, que por más pequeña que esta fuera, era crucial para el correcto funcionamiento del equipo. Estuvimos conscientes en todo momento de que cada uno de los compañeros era importante.

En cuanto al campo teórico, las actividades a realizar, temas de investigación, etc. siempre fueron distribuidos de manera equitativa; esta estrategia nos ayudó a lograr un trabajo eficaz.

Somos un equipo bastante equilibrado, ya que tenemos elementos muy buenos en teoría y otros en práctica, de esta manera podemos orientarnos unos a otros cuando surgen dudas; también imprimimos confianza en los compañeros que son cohibidos, de esta forma trabajan sin inhibiciones, lo hacemos porque sabemos que todos tenemos la capacidad de realizar las actividades requeridas de forma acertada, pero no a todos se les brinda la oportunidad al trabajar en equipo. Gracias a esta organización el equipo sufrió cambios, que nos hicieron más completos y unidos.

Por supuesto, no puedo omitir nuestra convivencia extrínseca al trabajo y prácticas de laboratorio. Como todas las personas, requerimos de espacios libres para la recreación; ya que la convivencia exterior muchas veces afecta ya sea de manera positiva o negativa el desempeño en las actividades conjuntas. Hemos jugado y bromeado, la relación del equipo es muy buena; así como todos nos divertimos y nos molestamos unos a otros igualmente todos trabajamos y somos responsables.

Sin duda alguna, extrañaré el trabajar con ellos, y si se vuelve a presentar la oportunidad, tengo la seguridad de que elegiremos estar juntos de nuevo, como el gran equipo que somos.

¡Ha sido una experiencia muy grata ser parte del equipo 2!

https://www.youtube.com/watch?v=REUc93wNbDk

LA EXPERIENCIA DE NOSOTROS EN TEATRO NEGRO

1. Se conoce y valora a sí mismo y aborda problemas y retos teniendo en cuenta los objetivos que persigue.

Atributo

Asume las consecuencias de sus comportamientos y decisiones.

Trabaja en forma colaborativa

8. Participa y colabora de manera efectiva en equipos diversos.

Atributos:

Asume una actitud constructiva, congruente con los conocimientos y habilidades con los que cuenta dentro de distintos equipos de trabajo.

Bueno, para nosotros, esto es un gran reto, independientemente de que tipo de teatro sea, Clásico o Negro de todos modos es un reto, ya que la mayoría de mi equipo y en si el grupo jamás han actuado en teatro.
El primer día de ensayo el día lunes, surgió una diferencia entre puntos de vista, entre el Joven que nos hizo el favor de apoyarnos y el profesor,  ya que pues obviamente el chico es una artista y eso conlleva a que trabaje las obras de teatro algo metafóricamente y fantásticas, a mí también me pareció descabellada alguna escena pero después de leerla y comprenderla llegue a la conclusión e que estaba bien esta obra, pero también coincidía con el Profesor, ya que yo también opinaba que fuera la obra más básica pero a él Joven no le pareció.
Ya después, platique con el Joven Bryan y le puse algunos limites, como por ejemplo que la obra fuese más básica, que no interfiriera en algunas cosas relacionadas con el ciclo biológico del parasito, ya que el profesor es el que sabe más de eso y también decidimos que el Profesor montaría la obra de teatro en negro y nosotros el Teatro clásico.

Ahora, el problema fue cambiar todo el libreto, el primer libreto lo hice con Bryan todo el domingo estuvimos estudiando el ciclo biológico del Plasmodium e incluso puedo decir que ya se el ciclo biológico de memoria y eso es bueno, el libreto cambio en la mayoría de las escenas quedando solamente la primera como lo indicaba el libreto anterior.
El segundo ensayo igualmente el día sábado el Profesor se molestó ya que no había figuras para montar ya la obra, y es que todos le dejaron a hacer todas las figuras mi compañera Rebeca.
Y el jueves posterior, ya ensayamos con figuras aunque faltan cosas por hacer yo creo que será un Éxito.